Caña de Azúcar, 23(1 y 2): 5-15. 2005.
PRESENCIA
DE PATÓGENOS FÚNGICOS
EN EL CULTIVO DE LA CAÑA DE AZÚCAR
EN VENEZUELA
(2002-2004)
Emma Ramírez Poletto1, Herman Nass 1
Recibido:
16/11/05. Aceptado: 15/09/06
1 INIA
Yaracuy. Estación Local Yaritagua. Kilómetro 3.
Vía El Rodeo, Sector
Radio Faro. Yaritagua, estado Yaracuy.
RESUMEN
El
cultivo de la caña de azúcar, a nivel mundial, es afectado por
enfermedades causadas por hongos, como: la roya (Puccinia melanocephala
Sydow),el carbón (Ustilago scitaminea Sydow), la peca amarilla (Passalora
koepkei (W. Krüger.) U. Braun & Crous combo nov.), la mancha de anillo
(Lepthosphaeria sacchari B. de Hann.), la mancha roja de la vaina (Passalora
vaginae (W. Krüger) U. Braun & Crous combo nov.), el pokkah boeng (Fusarium
moniliforme, Sheldon) y la pudrición roja de la nervadura (Colletotrichum
falcatum Went). Entre los años 2002 y 2004 se realizaron evaluaciones a
nivel de campo, en zonas productoras de Venezuela, correspondientes a los
estados Lara, Portuguesa, Yaracuy y Aragua, utilizando escalas diagramáticas.
Se colectaron muestras sintomáticas de enfermedades para ser analizadas
posteriormente en el Laboratorio de Fitopatología de la Estación Local
Yaritagua y confirmar así la existencia de los agentes causales, a través
del análisis morfométrico de las estructuras evidenciadas en los
aislamientos. Se identificó a P. melanocephala como el único agente causal
de la enfermedad conocida como la roya, afectando a las variedades: C323-68,
CP74-2005, CR74-250; entre otras a Cercospora longipes como causante de la
mancha parda en la variedad Ragnar; a Cytospora sacchari como agente causal
de la pudrición de la vaina en caña de azúcar ya F. moniliforme como
causante de pokkah boeng.
Palabras
claves: caña de azúcar, enfermedades, hongos.
PATHOGEN
FUNGI PRESENT
OF THE SUGAR CANE CROP
IN VENEZUELA (2002-2004).
ABSTRACT
The
sugarcane crop in worldwide is affected for disease caused by fungi like,
common rust (Puccinia melanocephala Sydow), smut (Ustilago scitaminea
Sydow),
yellow spot (Passalora Koepkei (W. Krüger) U.
Key
words: sugarcane, diseases, fungus.
INTRODUCCIÓN
El diagnóstico
de las enfermedades vegetales es un arte con sólidas bases científicas,
que requiere de la integración de todos y cada uno de
En
Venezuela la roya es una de las enfermedades que mayores estragos causa en
el cultivo, así como otras de las anteriormente mencionadas, por lo que
entre los años 2002-2004 con la ejecución del proyecto FONACIT-INIA
2000001485 "Evaluación y diagnóstico de enfermedades de la caña de
azúcar en Venezuela", se realizaron evaluaciones al nivel de campo en
las diferentes zonas productoras de Venezuela, correspondientes a los
estados: Lara, Portuguesa, Yaracuy y Aragua, en donde se procedió a su vez
a recolectar muestras sintomáticas de las enfermedades presentes en el
cultivo para ser analizadas posteriormente en el Laboratorio de Fitopatología
de la Estación Local Yaritagua del INIA Yaracuy y confirmar la existencia
de los diferentes agentes causales, prestando así la colaboración a los
diferentes programas de estudio de resistencia varietal y calidad
fitosanitaria de la semilla, que se llevan a cabo en las instalaciones
dellNIA Yaracuy, Fundacaña en Chivacoa, centrales azucareros y fincas de
productores de Venezuela.
METODOLOGíA
Evaluación
en campo
La
evaluación de las enfermedades se realizó con el uso de las escalas
diagramáticas siguientes:
Roya: se
efectuó con los biosensores de las variedades C323-68 y CP74-2005
utilizando la escala de Peterson (1948), modificada por Nass y Rodríguez
1995 (comunicación personal, 2005), donde se observa la hoja TVD (hoja con
el primer labio visible), la hoja inmediata inferior y la inmediata superior
en cinco puntos del tablón muestreado, y en cada punto se evaluaron ocho
plantas.
Peca
amarilla: fue evaluada mediante la escala elaborada por el INIA y Fundacaña,
el procedimiento se realizó de la misma forma que para la roya, pero con la
variante de que se utiliza como biosensor la variedad V84-19 y se evalúan
dos hojas inmediatamente superiores e inferiores a la hoja TVD.
Pokkah
boeng: se realizó mediante una escala elaborada por el INIA y Fundacaña, en
la cual se tomó en cuenta la incidencia de la enfermedad en las plantas; se
usó como biosensor la variedad C137-81.
Mancha de
anillo: se procedió igual que para la peca amarilla, pero se realizaron las
evaluaciones en la hoja TVD y la hoja inferior inmediata a ésta, utilizando
como biosensor la variedad V75-6.
Diagnóstico
e identificación en laboratorio
Del
material seleccionado, se tomaron secciones de la hoja, de aproximadamente 5
mm de largo x 5 mm de ancho, u otro tipo de tejido proveniente de la lesión
y zona de avance del síntoma, para ser sometidas a un proceso de desinfección
en solución de hipoclorito de sodio a concentración comercial (5,25%), por
un lapso de tres a cinco minutos, luego de los cuales se procedió a lavar
tres a cuatro veces con abundante
agua destilada estéril, para eliminar cualquier residuo de la solución
utilizada en el lavado, las secciones de tejido se colocaron en papel de
filtro estéril para su secado. Fueron sembradas en cajas de Petri
contentivas de agar agua (AA), dejando en incubación por un lapso de 24 a
48 horas hasta que se produjo el crecimiento micelial, se cortaron discos de
aproximadamente 5 mm y se procedió a sembrarlos en cajas con medio agar
papa dextrosa (PDA), manteniéndose en cámara de crecimiento en condiciones
de luminosidad de 12 horas luz 12 horas oscuridad y a una temperatura que
osciló entre 24 y 28°C; se realizaron observaciones a 24 - 48 - 72 horas
para ver el desarrollo de la colonia y caracterizar al patógeno.
A la par
de este procedimiento, al material vegetal fresco se le realizaron
seccionamientos a mano alzada e impresiones en cinta plástica (celoven),
para realizar observaciones al microscopio y estudio morfométrico de las
diferentes estructuras de los agentes causales de cada una de las
enfermedades en estudio y así poder caracterizar a la especie en su
identificación.
Se
efectuaron también montajes de cámaras húmedas por 48 horas para promover
así en muchos casos la esporulación del hongo; una vez pasado el tiempo se
procedió a realizar seccionamientos del material vegetal o impresiones en
cinta plástica para su posterior observación e identificación.
Se
hicieron aislamientos en medios agarificados para observar características
morfológicas de las colonias y corroborar que el patógeno observado en los
otros procedimientos es el aislado. Culminados todos los procedimientos para
la identificación, se realizó la toma de fotografías a las diferentes
estructuras estudiadas.
RESULTADOS
Y DISCUSIÓN
Una vez
efectuadas las evaluaciones de campo y finalizado el trabajo de aislamiento
del hongo, se realizó la identificación, la cual consistió
en
comparar las características y medidas obtenidas en las estructuras
observadas, tanto de los seccionamientos como de las aislamientos
realizados, con las claves y referencias bibliográficas que hacen
referencia a las especies en estudio y comparar estos caracteres con los
obtenidos para así corroborar la identificación de la especie aislada.
Roya (Puccinia
melanocephala)
En las
evaluaciones realizadas en campo, se pudo evidenciar que la enfermedad tiene
su máxima expresión entre los meses de julio y agosto, concordando con la
época de lluvias.
Diagnóstico:
en tejido fresco se observaron lesiones alargadas y delgadas cloróticas en
ambas caras de la hoja, que al madurar se tornan de color marrón por el
necrosamiento de los tejidos, éstas coalescían y formaban áreas necróticas
donde al madurar en ella se formaron las pústulas (uredosoros o telium) en
el envés de las hojas, donde se encontraban contenidas las estructuras
reproductivas del hongo, ya sean uredosporas o teleutosporas (Figura 1. A,
B, C). Al realizar el seccionamiento a mano alzada de los diferentes
materiales estudiados, se observaron uredosoros de color negro, con medidas
(282,50 µm) (Figura 2), en donde estaban contenidas las uredosporas de color
marrón dorado, ovoides, de pared gruesa y equinulada, con tres poros
germinativos y cuyas medidas fueron 22,75 (17,5 - 25 µm) de ancho x 29,5 (25
- 35 µm de largo (Figura 3A y 3B), concordando con lo previamente citado
por Sivanesen y Waller (1986), Root et al.
Variedad:
C323-68 (biosensor de la enfermedad). Recolectores: Emma Ramírez, Herman
Nass, Neyda Moro. Localidad: Estación Local Yaritagua, Yaritagua, Yaracuy,
Venezuela.
Variedad:
CP74-2005. Recolector: Emma Ramírez, Luis Figueredo, Herman Nass.
Localidad: Sector El Rodeo, hacienda San Nicolás.
Variedad:
CR74-250. Recolector: José George, Localidad: Santa Cruz de Bucaral, Falcón.
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| Figura 1. Sintomatología para la roya presente en campo. |
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| Figura 2. Uredosoro (40 x). |
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| A. Grupo de uredosporas. | B. Uredospora madura. |
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Figura 3.
Uredosporas de P. melanocephala (40 x). |
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Variedad:
V71-39. Recolector: José George. Localidad: Santa Cruz de Bucaral, Falcón.
Variedad:
B80-408. Recolector: José George. Localidad: Santa Cruz de Bucaral, Falcón.
Variedad:
Mayarí 5514. Recolector: Daniel Tovar. Localidad: finca Guaremal, kilómetro
24, vía Boca de Aroa.
Variedad:
V90-11. Recolectora: Neyda Moro. Localidad: Estación Local Yaritagua,
Yaritagua, Yaracuy.
Peca
amarilla (Passalora koepkei)
En las
observaciones realizadas en campo se evidenció que la enfermedad está
presente durante todo el año en las zonas cañeras de Venezuela, pudiendo
causar pérdidas económicas mayores a 30% de la producción en variedades
susceptibles y en zonas de alta conductividad, como son el Bajo Yaracuy y
Portuguesa, con un régimen pluviométrico mayor a 1.300 mm.
La
enfermedad se desarrolla en un amplio rango de temperatura (15 - 33°C), las
esporas son diseminadas por el viento y sobreviven en el tejido infectado.
Diagnóstico:
aparecen manchas irregulares de color amarillo que al envejecer se tornan de
coloración anaranjada a rojiza, ocupando toda la lámina foliar, son
redondeadas a irregulares que coalescen y forman grandes áreas afectadas
(Ovalle,1997) (Figura 4). Cuando las condiciones de temperatura y humedad
relativa son las adecuadas, se observa un micelio de color blanco grisáceo
en el envés de la hoja del cual se identificó el hongo con las siguientes
características morfométricas:
Variedad:
V84-19 (biosensor de la enfermedad). Recolectores: Emma Ramírez, Herman
Nass, Neyda Moro. Localidad: Estación Local Yaritagua, Yaritagua, Yaracuy.
Venezuela.
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Figura 4. Sintomatología asociada a la peca amarilla. |
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| Figura 5.
Estructuras de P. koepkei. |
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Variedad:
CR83-323. Recolectora: Neyda Moro. Localidad: Estación Cuarentenaria
Abierta. Estación Local Yaritagua, Yaritagua. Yaracuy
Variedad: CR87-339.
Recolectores: Neyda Moro. Localidad: Estación Cuarentenaria Abierta. Estación
Local Yaritagua, Yaritagua. Yaracuy;
Variedad: SP80-1816.
Recolectora: Neyda Moro. Localidad: Estación Cuarentenaria Abierta. Estación
Local Yaritagua. Yaritagua, Yaracuy
Variedad: SP86-42. Recolectora: Neyda
Moro. Localidad: Estación Cuarentenaria Abierta. Estación Local Yaritagua.
Yaritagua, Yaracuy
Variedad: Ragnar. Recolectora: Emma Ramírez, Rosalba
Tovar y Alejandro Anzola. Localidad: Central El Palmar. San Mateo, Aragua
Variedad: B80-529. Recolector: Álvaro Vargas. Localidad: Rubio, Táchira.
Variedad: POJ-2878. Recolector: Álvaro Vargas. Localidad: Rubio, Táchira.
Pokkah
boeng o cogollo retorcido (Fusarium moniliforme)
En
observaciones realizadas en campo se pudo evidenciar que la mayor incidencia
de la enfermedad se ubica entre los meses de mayo a agosto, concordando con
el período lluvioso, por lo que se infiere que se necesita de alta humedad
relativa para que la enfermedad desarrolle; así mismo, la mayor presencia
de la misma fue en el estado Yaracuy (Chivacoa - Yaritagua). Se observó allí
una variada gama de síntomas
asociados
con esta enfermedad como son: cogollo retorcido, áreas cloróticas en
diferentes niveles de las hojas y vaina, quemado del cogollo y de hojas,
encrespamiento de hojas, áreas de color marrón rojizo (Figura 6).
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Figura 6.
Sintomatología asociada al pokkah boeng, en campo. |
Diagnóstico:
al realizar los aislamientos de secciones de tejido se pudo observar un
hongo cuyos microconidios eran de una sola célula, raramente de dos,
ovoides con medidas que oscilan entre 6 y 10 µm de largo x 2 µm de ancho
(Figura 7. A); macroconidios, con pared delgada, rectos a curvados con
cuatro a siete septos, de 52,5 x 3,75 µm (Figura 7. B), concordando estas
medidas con las citadas por Sivanesan y Waller (1986) para la especie
Fusarium moliniforme, Sheldon.
Variedad:
C137-81 (biosensor). Recolectora: Emma Ramírez. Localidad: Estación Local
Yaritagua. Yaritagua, Yaracuy. Venezuela Variedad: C323-68. Recolectora:
Emma Ramírez. Localidad: Estación Local Yaritagua. Yaritagua, Yaracuy.
Central la Pastora y Central Carora.
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| A. Microconidios (100x). | B. Macroconidios (100x). |
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Figura 7.
Estructuras de F. moniliforme. |
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Variedad:
CP74-2005. Recolectora: Emma Ramírez. Localidad: Hacienda San Rafael Las
Velas. Yaritagua. Yaracuy
Variedad: V-2001 y Cl 59-105(21). Recolectoras:
Rosaura Briceño.
Variedad:
CR83-323. Recolectora: Neyda Moro. Localidad: Estación Cuarentenaria
Abierta. Estación Local Yaritagua, Yaritagua. Yaracuy
Variedad: SP 78-74.
Recolectoras: Emma Ramírez, Neyda Moro. Localidad: Jardín Variedades
Fundacaña. Chivacoa. Yaracuy.
Variedad:
B75-49. Recolectoras: Emma Ramírez, Neyda Moro. Localidad: Jardín
Variedades Fundacaña. Chivacoa. Yaracuy.
Variedad:
PR 68-3120. Recolectora: Neyda Moro. Localidad: Estación Local Yaritagua,
Yaritagua. Yaracuy
Variedad: B74-118. Recolectores: Emma Ramírez, Neyda
Moro, Luis Figueredo, Gustavo Palencia, Rafael Carballo y Franklin Palacios.
Localidad: Hacienda San José. Central Matilde. Chivacoa . Yaracuy
Variedad:
PR69-2176. Recolectora: Emma Ramírez. Localidad: Santa Fe. Central La
Pastora. Carora. Lara.
Variedad:
Mayari 55-14. Recolectar: Jorge Cepero. Localidad: Finca Guaremal, kilómetro
24. Vía Boca de Aroa.
Variedad:
V84-19. Recolectoras: Emma Ramírez, Neyda Moro. Localidad: Hacienda San
Nicolás. Las Velas, Yaritagua.
Mancha de
anillo (Leptosphaeria sacchari)
En campo,
la enfermedad se distribuye en todas las zonas productoras del país,
presentándose en condiciones de alta humedad.
Diagnóstico:
aparecen lesiones necróticas en el tejido foliar, principalmente en las
hojas bajeras de la planta, las cuales están bordeadas por un anillo de
coloración marrón rojiza (Figura 8).
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Figura 8.
Sintomatología en campo de la mancha de anillo. |
Al
realizar seccionamiento del tejido, se observaron estructuras periteciales
inmersas o superficiales en el tejido de 80 a 120 µm de ancho (Figura 9 A),
ascos bitunicados de bases cortas, cilíndricos a clavados y contentivos de
ocho ascosporas, cuyas medidas son 78 x 86 µm. Ascosporas de cuatro células,
hialinas, elipsoides con la segunda célula
ligeramente más ancha, con medidas de 18,75 x 1,55 µm (Figura 9 B),
coincidiendo éstas con las características indicadas por Sivanesen y
Waller (1986) para la especie Lepthosphaeria sacchari B.
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| A.
Peritecio (40 x). |
B.
Ascosporas (100 x). |
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Figura 9.
Estructuras de Leptosphaeria sacchari. |
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Variedad:
V75-6 (biosensor). Recolectora: Emma Ramírez. Localidad. Estación Local
Yaritagua, Yaritagua. Yaracuy. Fundacaña. Chivacoa.
Variedad:
CC85-92. Recolectora: Emma Ramírez. Localidad. Jardín de enfermedades de
caña de azúcar de la Estación Local Yaritagua, Yaritagua. Yaracuy.
Variedad:
B75-403. Recolector: Noel Alvarez. Localidad: Hacienda El Rosario. Sector La
Marroquina. Municipio San Felipe. Parroquia San Javier. Yaracuy.
Variedad:
SP74-12. Recolector: H. Nass. Localidad: Ospino.
Variedad:
CP89-91. Recolectora: Neyda Moro. Localidad: Estación Cuarentenaria
Abierta. Estación Local Yaritagua, Yaritagua. Yaracuy
Mancha
roja de la vaina (Passalora vaginae)
En las
evaluaciones realizadas en campo se pudo verificar la existencia de la
enfermedad durante todo el año; en variedades susceptibles, su mayor
incidencia se ubica entre los meses de mayo a agosto con alta humedad
relativa.
Diagnóstico:
en tejido fresco se observan manchas de coloración pardo rojiza en las
vainas de las hojas (Figura 10). Al realizar impresiones al tejido se pudo
observar un hongo que presenta conidióforos de coloración marrón oliváceos,
ramificados, septados, de 76,5 (50-112,5 µm) de largo x 4,37 (3,75-5 µm)
de ancho (Figura 11).
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Figura
10. Sintomatología de la mancha roja de la vaina, en campo |
Conidios de color marrón claro, lisos, de uno a tres septos, cilíndricos a obclavados, cuyas medidas fueron 34,25 (30-37,5 µm) de largo x 4,25 (3,75-5 µm) de ancho (Figura 11), concordando esto con lo indicado por Sivanesen y Waller (1986) para la especie Mycovellosiella vaginae (Krüger) Deigthon, actualmente denominada como Passalora vaginae (WKrüger) Uo Braun & Crous combo nov. (CBS, 2003).
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Figura
11. Conidios y conidióforos de P. vaginae. |
Variedad:
V75-6. Recolectora: Emma Ramírez. Localidad: Estación Local Yaritagua,
Yaritagua.
Variedad:
C323-68. Recolectora: Emma Ramírez. Localidad: Estación Local Yaritagua,
Yaritagua. Yaracuy.
Variedad
CC85-92. Recolectora. Emma Ramírez. Neyda Moro. Localidad: Jardín de
enfermedades. Estación Local Yaritagua, Yaritagua.
Variedad:
CR74-250. Recolectora. Emma Ramírez. Localidad: Central Carora. Carora.
Lara.
Pudrición
roja de la nervadura y el tallo (Colletotrichum falcatum)
En las
evaluaciones realizadas en campo se observó que la enfermedad estuvo
presente durante el todo el año, siendo susceptibles todas las variedades.
Diagnóstico:
aparecen áreas de coloración rojiza que al extenderse en ambas direcciones
ocupan todo el raquis, hay presencia de áreas necróticas en las lesiones
de coloración pajiza (Figura 12), sobre las que se destacan las estructuras
de fructificación del hongo (Chinea et al., 2000), las lesiones pueden
observarse en la lámina foliar. Al realizar impresión de tejido fresco y
proveniente de cámara húmeda se observó
un hongo con conidios hialinos, falcados o en forma de hoz (Figura 13), con
células conidiógenas y conidióforos hialinos, septados, con septas
simples no septadas, de coloración marrón y ligeramente abultadas en la
base; estas características morfoanatómicas concuerdan con las citadas por
Sivanesen y Waller en 1986, para la especie Colletotrichum falcatum, Went.
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Figura 12. Sintomatología de la pudrición roja de la nervadura, presente en campo. |
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Figura
13. Conidios de Colletotrichum falcatum. |
Mancha
parda o mancha marrón (Cercospora longipes)
En los
diferentes muestreos realizados en campo se pudo evidenciar que la
enfermedad mancha parda se encuentra distribuida principalmente en el estado
Yaracuy, y en el estado Aragua, específica mente en la zona de San Mateo,
donde se localiza el Central El Palmar. Se ha encontrado también en los
estados Portuguesa y Táchira (en Bramon a 1.200 msnm, donde solamente se
siembran variedades susceptibles como la Ragnar); en la actualidad no se
presenta causando daño económico de importancia, pero la identificación
es una herramienta valiosa para tomar medidas de control.
Diagnóstico:
manchas alargadas de aproximadamente 1 a 11 mm de largo, de forma oval y
color marrón oscuro, con un halo clorótico. Las lesiones, al madurar, se
presentan de color marrón claro, de aspecto seco y se distribuyen en la lámina
foliar, principalmente desde la mitad hacia el ápice (Figura 14) y mueren
prematuramente. Al realizar las impresiones en cinta plástica al tejido
fresco, se observaron conidióforos de color marrón, de aproximadamente 57
µm de largo, septados (Figura 15), conidios hialinos a subhialinos, rectos,
flexuosos, con cinco a diez septos, cuyas medidas son 70 (32,5-100 µm) de
largo x 4,5 (2,5-5 µm) de ancho, con cicatriz levemente marcada (Figura
15), concordando ésta con lo expuesto por Ovalle Sáenz (1997), Rott et al.
(2000) para la especie Cercospora longipe, Butler.
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Figura 14. Sintomatología de la mancha parda, presente en campo. |
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Figura
15. Estructuras de Cercospora longipes. |
Variedad:
Ragnar. Recolectores: Emma Ramírez, Alejandro Anzola y Rosalba Tovar.
Central El Palmar. Aragua.
Variedad:
PR68-3120. Recolectora: Neyda Moro. Localidad: Estación Cuarentenaria
Abierta Estación Local Yaritagua, Yaritagua. Yaracuy
Variedad: PR83-323.
Recolectora: Neyda Moro. Localidad: Estación Cuarentenaria Abierta. Estación
Local Yaritagua, Yaritagua. Yaracuy
Variedad: desconocida. Recolectora: July
Urdaneta. Localidad: municipio San Javier. Yaracuy.
Mancha de
ojo (Dreschlera sacchari)
Las
observaciones realizadas en las zonas cañameleras de Venezuela indican que
la enfermedad tiene su mayor incidencia en la variedad RD75-11, en las zonas
altas como Bramón, estado Táchira, ubicado a 1.200 msnm, en Humocaro Bajo
en el estado Lara y en el río Acarigua, estado Portuguesa. Esta patología
conlleva a un problema económico debido a la toxina que produce el hongo,
ya que marchita la hoja en su totalidad; el medio ambiente y en especial, la
humedad y temperaturas entre 15 y 22°C, hacen que la enfermedad se
desarrolle con mayor severidad.
Diagnóstico:
manchas ovales de color marrón oscuro, rodeadas de un halo color amarillo.
Se desarrolla un línea desde la mancha hacia el ápice, de color amarillo
rojizo, producto de una toxina segregada por el hongo; igualmente se observa
necrosamiento de la lámina foliar (Figura 16). Al realizar impresiones con
una cinta plástica se observaron conidios de color marrón a marrón
olivaceo, curvados, raramente rectos, cilíndricos, con cinco a nueve
distoseptos, cuyas medidas oscilaron entre 37 a 94 µm de largo x 11 a 15 µm de ancho (Figura 17).
Conidióforos
anclados sencillos o en pequeños fascículos de color marrón a marrón
olivaceos, midiendo aproximadamente 180 µm de largo x 4 a 6 µm de ancho
(Figura 17), concordando con esto lo expuesto por Sivanesen y Waller (1986)
para la especie Dreschlera sacchari.
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Figura 16
. Sintomatología de la mancha de ojo, en campo. |
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Figura
17. Conidios y conidióforos de D. sacchari. |
Variedad:
Ragnar. Recolectora: Rosalba Tovar. Localidad: Central El Palmar. San Mateo,
Aragua.
Variedad:
874-118. Recolectores: Emma Ramírez, Luis Figueredo, Neyda Moro. Localidad:
Hacienda San José. Central Matilde. Chivacoa.
Variedad:
R883-1248. Recolectoras: Rosalba Tovar, Emma Ramírez.
Variedad:
PR69-2176. Recolectora: Emma Ramírez. Localidad: Santa Fe. Central La
Pastora. Carora. Lara.
Variedad:
V84-19. Recolectoras: Emma Ramírez, Neyda Moro. Localidad: Hacienda San
Nicolás. Las Velas, Yaritagua. Yaracuy
Variedad: RD75-11. Recolectoras:
Emma Ramírez, Neyda Moro. Localidad: Estación Local Yaritagua. INIA
Yaracuy
Pudrición
de la vaina (Cytospora sacchari)
Diagnóstico:
los síntomas se evidencian sobre la vaina de la hoja, observándose manchas
aisladas de color marrón a negro, abriendo en un ostíolo simple, las
cuales coalescen. En el tallo conidiómata estromático subepidérmico, cónico,
producido en la superficie del área enferma, inmerso y errumpente a manera
de espinas de color negro dándole una textura irregular. (Figura 18).
Conidios de una célula, hialinos, alantoides, exudados en gotas, de forma
oval de 3 11m de largo x 1,2 11m de ancho.
Conióforos
hialinos, septados de 16 a 25 11m de largo, concordando esto con las medidas
especificadas por Sivanesen y Waller para la especie Cytospora sacchari.
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Figura
18. Estructuras de Cytospora sacchari en tallo de caña de azúcar. |
Variedad: V84-19. Recolectoras: Emma Ramírez, Neyda Moro. Localidad: Estación Local Yaritagua. Yaritagua. Yaracuy
Pudrición
basal (Marasmius sacchari)
La
sintomatología más evidente es la pudrición y muerte de los nuevos
tallos, así como el necrosamiento de la vaina con presencia de un micelio
de color blanco, que se desarrolla en la base de ésta y en las raíces. En
el interior del tallo, al realizar un corte longitudinal se observa una
coloración marrón claro (Figura 19).
Diagnóstico:
al realizar montaje en impresión con cinta se observaron conidios y conidióforos,
que al ser comparados con los descritos por Sivanesen y Waller (1986)
concordaron con los de la especie Marasmius sacchari.
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Figura 19. Micelio blanquecino en raíces de caña de azúcar. |
CONCLUSIONES
Las
enfermedades evaluadas por sintomatología en las diferentes áreas del país
fueron confirmadas en el laboratorio, teniendo concordancia con lo indicado
en la bibliografía para enfermedades de la caña de azúcar.
Se
identificó a Puccinia melanocephala como único agente causal de la
enfermedad conocida como roya, afectando a las variedades estudiadas:
C323-68, CP74-2005, CR74-250, B80-408, S P74-2948 , V9011, Ragnary Mayari
5514.
Se
identificó a Cercospora longipes como agente causal de la mancha parda, en
la variedad Ragnar.
Se
identificó a Cytospora sacchari como agente causal de la pudrición de la
vaina en caña de azúcar, en la variedad V84-19.
Se
identificó a Fusarium moniliforme como agente causal de la sintomatología
del cogollo retorcido, moteado blanquecino en hojas, áreas cloróticas en
vaina y hojas, quemado del cogollo y hojas, encrespamiento y arrugamiento de
la lámina foliar en las variedades: C13781, C323-68, CP74-2005, CR83-323,
B74-118, PR69-2176, PR683120,SP78-74, Mayari 5514, V84-19, Cl59-105.
El
desarrollo de las diferentes enfermedades se ve influenciado por condiciones
de alta humedad relativa.
BIBLIOGRAFÍA
Chinea
A.; H. Nass; C. Daboin y M. D. Diez. 2000. Enfermedades y daños de la caña
de azúcar en Latinoamérica. Talleres Venezuela.
Crous
P. and U. Braun. 2003. Mycosphaerella and its anamorhs: 1.
EEOC-Sección
Fitopatología. 2000. La gaceta de Tucumán-Suplemento Rural. Tucumán
Argentina.
Ovalle Sáenz W.1997. Manual para identificación de enfermedades de la caña de azúcar. Cengicaña. Guatemala. p. 83
Rott. P.; R. A. Bailey; J. C. Comstock; B.
J. Croft; J. C. Girard; A. S.
Sivanesen
A. and J. M. Waller. 1986. Sugarcane diseases.
AGRADECIMIENTO
A la
licenciada Marie Beres y a la TSU Neyda Moro, por la colaboración prestada
en la recolección de las muestras.
Este trabajo fue cofinanciado por el Fondo Nacional de Ciencia, Tecnología e Innovación (FONACIT), proyecto N° 2000001485: "Evaluación y manejo de enfermedades de importancia económica en Venezuela" 2002-2004.